新型大(dà)量植物基因組DNA快速提取試劑盒
DE118-01
10次
适用于快速提取植物組織、細胞、真菌基因組DNA
規格 價格
10次 ¥1280

1/适用範圍:

适用于快速提取植物組織、細胞、真菌基因組DNA。

 

 

2/試劑盒組成、儲存、穩定性:

試劑盒組成

保存

10次(DE118-01)

RNase A(10mg/ml)

-20℃

500 μl

裂解液A

室溫

50 ml

裂解液B

室溫

20 ml

裂解液C

室溫

40 ml

第一次使用前按說明(míng)加指定量乙醇

漂洗液WB

室溫

25ml x2      
第一次使用前按說明(míng)加指定量乙醇

洗脫緩沖液EB

室溫

20 ml

吸附柱DA

室溫

10個(gè)

收集管CT(50ml)

室溫

10個(gè)

                         本試劑盒在室溫儲存12個(gè)月不影(yǐng)響使用效果。

 

 

3/儲存事項:

① 裂解液A、C低(dī)溫時(shí)可(kě)能出現析出和(hé)沉澱,可(kě)以在65℃水(shuǐ)浴幾分鍾幫助重新溶解(裂解液C加入乙醇前可(kě)加熱,加入乙醇後不可(kě)加熱),恢複澄清透明(míng)後冷卻到室溫即可(kě)使用。

② 避免試劑長時(shí)間(jiān)暴露于空(kōng)氣中産生(shēng)揮發、氧化、pH值變化,各溶液使用後應及時(shí)蓋緊蓋子。

 

 

4/産品介紹:

該試劑盒采用DNA吸附柱和(hé)新型獨特的溶液系統,适合于從含酚類、多(duō)糖類和(hé)酶抑制(zhì)物的植物樣品中快速簡單地提取基因組DNA。可(kě)在1小(xiǎo)時(shí)左右完成一個(gè)或多(duō)個(gè)1g新鮮或200mg幹燥的植物樣品DNA的純化工作(zuò)。提取過程不需要用到有(yǒu)毒的酚氯仿等有(yǒu)機物抽提,也不需要用到耗時(shí)的異丙醇或乙醇沉澱,并能快速高(gāo)效地去除多(duō)糖類、酚類和(hé)酶抑制(zhì)物等雜質,純化的DNA可(kě)直接用于PCR、酶切和(hé)雜交等實驗。

新鮮或幹燥的植物組織(細胞)磨碎後經裂解液裂解;蛋白質、多(duō)糖、細胞殘片被沉澱去除;然後基因組DNA在高(gāo)離序鹽狀态下選擇性吸附于離心柱內(nèi)矽基質膜, 再通(tōng)過一系列快速的漂洗-離心的步驟, 進一步将多(duō)糖,多(duō)酚和(hé)細胞代謝物,蛋白等雜質去除, 最後低(dī)鹽的洗脫緩沖液将純淨基因組DNA從矽基質膜上(shàng)洗脫。

 

 

5/産品特點:

① 離心吸附柱內(nèi)矽基質膜全部采用特制(zhì)吸附膜,柱與柱之間(jiān)吸附量差異極小(xiǎo),可(kě)重複性好。

② 不需要使用有(yǒu)毒的苯酚等試劑,也不需要乙醇沉澱等步驟。

③ 快速,簡捷,單個(gè)樣品操作(zuò)一般可(kě)在1小(xiǎo)時(shí)內(nèi)完成。

④ 數(shù)種去多(duō)糖、多(duō)酚成份和(hé)多(duō)次柱漂洗确保高(gāo)純度,OD260/OD280典型的比值達1.7~1.9,可(kě)直接用于PCR,Southern-blot和(hé)各種酶切反應。

 

 

6/注意事項

① 開(kāi)始實驗前将需要的水(shuǐ)浴先預熱到65℃備用。

② 裂解液C中含有(yǒu)刺激性化合物,操作(zuò)時(shí)要戴乳膠手套,避免沾染皮膚,眼睛和(hé)衣服。若沾染皮膚、眼睛時(shí),要用大(dà)量清水(shuǐ)或者生(shēng)理(lǐ)鹽水(shuǐ)沖洗。

③ 不同來(lái)源的植物組織材料中提取DNA 的量會(huì)有(yǒu)差異,一般1g新鮮組織典型産量可(kě)達30-260μg。

④ 洗脫液EB不含有(yǒu)螯合劑EDTA, 不影(yǐng)響下遊酶切、連接等反應。也可(kě)以使用水(shuǐ)洗脫, 但(dàn)應該确保pH大(dà)于7.5, pH過低(dī)影(yǐng)響洗脫效率。用水(shuǐ)洗脫DNA應該保存在-20℃。DNA如果需要長期保存,可(kě)以用TE緩沖液洗脫 (10mM Tris-HCl, 1mM EDTA,pH 8.0),但(dàn)是EDTA可(kě)能影(yǐng)響下遊酶切反應,使用時(shí)可(kě)以适當稀釋。

 

 

7/操作(zuò)步驟:(實驗前請(qǐng)先閱讀注意事項)

提示:

  1. ● 第一次使用前請(qǐng)先在漂洗液WB中加入指定量無水(shuǐ)乙醇,充分混勻,加入後請(qǐng)及時(shí)在方框打鈎标記已加入乙醇,以免多(duō)次加入!
  2. ● 第一次使用前請(qǐng)先在裂解液C中加入指定量無水(shuǐ)乙醇!
  3. ● 将裂解液A在65℃水(shuǐ)浴預熱。
  4. 1、取适量植物組織(最大(dà)處理(lǐ)量不超過新鮮組織1g 或幹重組織200 mg)在研缽中加入液氮充分碾磨成細粉。
  5. 2、轉移細粉到一個(gè)15ml離心管,不要解凍,加入5ml裂解液A(已經65℃預熱) 和(hé)40μl RNase A(10 mg/ml),旋渦振蕩,充分混勻幫助裂解。如果組織裂解困難,可(kě)根據需要加一個(gè)輕柔勻漿10秒(miǎo)的步驟幫助裂解。大(dà)多(duō)數(shù)情況下不需要離心去除未完全裂解的組織,因為(wèi)後面有(yǒu)一個(gè)離心去除的步驟。
  6. 3、65℃水(shuǐ)浴10-15分鍾,在水(shuǐ)浴過程中颠倒離心管2-3次,混合樣品。
  7. 4、加入1.8ml裂解液B,充分混勻,冰上(shàng)放置10分鍾, 9,000 x g 室溫離心10 分鍾,小(xiǎo)心吸取上(shàng)清到一個(gè)新的50ml離心管,注意不要吸到界面物質。如果沒有(yǒu)高(gāo)速離心機,也可(kě)以4,000-5,000 x g離心,适當延長時(shí)間(jiān)即可(kě)。
  8. 5、計(jì)算(suàn)上(shàng)清量,加入1.5倍體(tǐ)積的裂解液C(請(qǐng)先檢查是否已加入無水(shuǐ)乙醇!),立即渦旋振蕩混勻。加入裂解液C可(kě)能會(huì)出現絮狀沉澱,但(dàn)不影(yǐng)響DNA提取。注意将裂解液C直接加入到上(shàng)清并立即渦旋振蕩混勻。
  9. 6、将上(shàng)一步所得(de)混合物(包括可(kě)能出現的沉澱)加入一個(gè)吸附柱DA中,(吸附柱放入收集管CT中)3,000-5,000 x g離心5分鍾,倒掉收集管CT中的廢液。
  10. 7、加入10ml漂洗液WB(請(qǐng)先檢查是否已加入無水(shuǐ)乙醇!),3,000-5,000 x g離心4分鍾,棄掉廢液。
  11. 8、加入10ml漂洗液WB(請(qǐng)先檢查是否已加入無水(shuǐ)乙醇!),3,000-5,000 x g離心3分鍾,棄掉廢液。
  12. 9、将吸附柱DA放回空(kōng)收集管CT中,最高(gāo)速(最好大(dà)于9,000 x g,如果離心機轉速低(dī),需要相應延長離心時(shí)間(jiān))離心10分鍾以幹燥膜基質殘留乙醇,用槍頭吸除內(nèi)圈壓環和(hé)柱壁之間(jiān)可(kě)能殘留的乙醇,室溫或者烘箱晾幹幾分鍾。
  13. 10、取出吸附柱DA,放入一個(gè)幹淨的離心管中,在吸附膜的中間(jiān)部位加1-2ml洗脫緩沖液EB(洗脫緩沖液可(kě)事先在 65-70℃水(shuǐ)浴中預熱), 室溫放置5分鍾,3,000-5,000 x g離心3分鍾,得(de)到DNA。此外将得(de)到的溶液重新加入吸附柱中,室溫放置2分鍾後再洗脫一遍,可(kě)以提高(gāo)濃度和(hé)産量。洗脫體(tǐ)積越大(dà),洗脫效率越高(gāo),如果預計(jì)和(hé)需要産量高(gāo),可(kě)增大(dà)洗脫體(tǐ)積,如果需要DNA濃度較高(gāo),可(kě)以适當減少(shǎo)洗脫體(tǐ)積, 但(dàn)是最小(xiǎo)體(tǐ)積不應少(shǎo)于500μl,體(tǐ)積過小(xiǎo)降低(dī)DNA洗脫效率,減少(shǎo)DNA産量。
  14. 11、DNA可(kě)以存放在2-8℃,如果要長時(shí)間(jiān)存放,可(kě)以放置在-20℃。

 

8/問題與解決方法

問題

評論與建議

DNA産量低(dī)

*處理(lǐ)材料過量或者裂解不完全

-建議:使用适量的起始材料,充分研磨或者勻漿

*結合條件不恰當

-建議:步驟5精确估計(jì)上(shàng)清量,加入1.5倍體(tǐ)積裂解液C量要準确

RNA殘留

*植物RNA含量太豐富

-建議:提高(gāo)RNase A處理(lǐ)濃度

未提取到DNA

*漂洗液WB中忘記加無水(shuǐ)乙醇

-建議:第一次實驗時(shí),在漂洗液WB中加入指定量無水(shuǐ)乙醇。

離心柱堵塞

*研磨裂解不充分,團塊多(duō);裂解物太粘稠;離心力太小(xiǎo)

-建議:參見步驟2,加一個(gè)離心步驟去除;減低(dī)起始材料量,不要處理(lǐ)過量,加大(dà)離心力

洗脫下來(lái)的
DNA溶液帶顔色
或者膜上(shàng)有(yǒu)明(míng)顯
的色素殘留

*漂洗次數(shù)不夠

-建議:步驟8完成後,加10ml乙醇再漂洗一遍

*起始材料太多(duō)過量

-建議:減少(shǎo)起始處理(lǐ)材料,不要過量

洗脫下來(lái)的
DNA産量低(dī)

*離心柱殘留有(yǒu)較多(duō)乙醇或者底部不慎沾有(yǒu)乙醇

-建議:确保做(zuò)了步驟9,否則殘留乙醇會(huì)影(yǐng)響洗脫效率。

*使用了水(shuǐ)或者其它非最佳液體(tǐ)代替洗脫緩沖液

-建議:仔細閱讀步驟10和(hé)注意事項4和(hé)隻使用洗脫緩沖液EB洗脫。

*洗脫緩沖液量偏低(dī)

-建議:使用2ml洗脫緩沖液洗脫

A260吸光值
異常偏高(gāo)

*一些(xiē)矽基質膜成分一起洗脫下來(lái),幹擾了吸光值

-建議:将洗脫的基因組DNA溶液13,000rpm再離心一分鍾,小(xiǎo)心取上(shàng)清使用。

DNA下遊酶切
不能切開(kāi)或者
酶切不完全

*一些(xiē)矽基質膜成分一起洗脫下來(lái),抑制(zhì)了酶切反應

-建議:将洗脫的基因組DNA溶液13,000rpm再離心一分鍾,小(xiǎo)心取上(shàng)清使用。

*離心柱殘留有(yǒu)較多(duō)乙醇或者底部不慎沾有(yǒu)乙醇抑制(zhì)了酶切反應

-建議:确保做(zuò)了步驟9,然後空(kōng)氣中晾幾分鍾,讓殘留乙醇揮發。